Réseau :
CurieCoreTech
Présentation
Le Multimodal Imaging Center (MIC) a été créé le 1er janvier 2020 par les quatre tutelles, le CNRS, l’Inserm, l’Institut Curie, et Université Paris-Saclay, en tant qu’unité de service UAR2016 / US43.
L’Unité MIC regroupe les expertises d’Imagerie en Microscopie photonique, Microscopie électronique et Microscopie ionique et une expertise en Traitement et analyse d’images. L'unité met à disposition de la communauté scientifique, académique et industrielle une offre de service, de formation et de R&D en imagerie multimodale.
Notre unité de service, avec une vision intégrée propose des activités ciblées autour de l’imagerie multi-échelles et multimodales sur différents types d’échantillons (molécules, cellules et tissus).
Ces activités sont réparties en 4 pôles d’expertises autour de l’imagerie sub-cellulaire et corrélative, de la cartographie chimique du multiplexage et de l’analyse et traitements des images générées.
Gouvernance de l’unité :
Le directeur s’appuie sur plusieurs comités pour piloter l’unité.
Le comité des tutelles décide des grandes orientations scientifiques, technologiques et organisationnelles, en lien avec le contexte géographique.
Le comité d’orientation stratégique définit les priorités, assure la qualité des services offerts et propose des développements méthodologiques.
Les comités d’utilisateurs restreints par pôle permettent de prendre des décisions collectives sur le fonctionnement et la gestion du Pôle et de faire des propositions d'orientation stratégique.
Membres
Anciens membres de l'équipe
- Antoine Cossa (2018-2022), Doctorant
- Noémie Bozier (2025), Stagiaire de recherche
- Lisa Garrigos (2025), Stagiaire de recherche
- Kamenan N'Gadi (2024), Stagiaire de recherche
- Rayane Bennani (2024), Stagiaire de recherche
- Arthus Georgelin (2023), Stagiaire de recherche
- Sylvain Trépout (IR2 Inserm, 2022), Ingénieur de recherche
- Camille Rabier (2022), Stagiaire de recherche
- Anthony Boutard (2022), Stagiaire de recherche
- Ptissam Bergam (IECN CNRS, 2021), Ingénieur d'études
- Thomas El Khilali (2021), Stagiaire de recherche
- Typhaine Rumiac (2021), Stagiaire de recherche
- Jean-Luc Guerquin-Kern (CRHC Inserm, 2020) , Chargé de Mission de Recherche
- Amandine Dumazel (2020), Stagiaire de recherche
- Rayane Serir (2020), Stagiaire de recherche
Publications clés
Cancer Cell - 01/02/2026
Voir les auteurs
Proc Natl Acad Sci U S A - 22/09/2025
Current Biology - 17/04/2025
Astronomy & Astrophysics - 23/05/2025
Neuro-Oncology - 08/07/2025
Communications Engineering - 11/08/2025
Annals of the Rheumatic Diseases - 01/05/2025
Voir les auteurs
Biology Open - 15/12/2024
Voir les auteurs
Vie d'équipe
Traitement et analyse d'images (IPA)
Vidéos Université Paris-Saclay
" Au cœur de l'Intelligence Artificielle"
Deux membres du pôle de traitement et d’analyse d’images du centre d’imagerie multimodale ont récemment été mis en lumière : Cédric Messaoudi et Noémie Bozier. Ils ont participé au tournage d’une vidéo réalisée dans le cadre de l’exposition « Au cœur de l’Intelligence Artificielle (IA) », organisée par l’Université Paris-Saclay.
À travers cette série de vidéos, vous découvrirez comment les équipes de l’Université, contribuent à des avancées majeures dans des domaines aussi variés que la santé, l’énergie, les sciences humaines, l’industrie ou l’environnement. Les vidéos mettent en lumière la manière dont l’IA façonne notre quotidien et transforme durablement nos usages.
Ne manquez pas la vidéo n°7 consacrée à l’équipe IPA pour une immersion inspirante au cœur de l’imagerie et de l’intelligence artificielle.
Toute l'unité
Journée scientifique et médicale
12/12/2025 Institut Curie-Paris
À l’occasion des JSM 2025, et à l’initiative du service événementiel de l’Institut Curie, une série de courtes vidéos a été projetée au cours de cette journée afin de mettre en lumière le personnel de l’Institut. Dans ce cadre, Christine Walczak, ingénieure d’étude Inserm au sein du pôle de traitement et d’analyse d’image, a présenté son parcours professionnel ainsi que les thématiques essentielles auxquelles elle est associée, contribuant ainsi à valoriser l’activité du Centre d’Imagerie Multimodal.
Toute l'unité
Formation continue
Dans le cadre d’une licence 3 professionnelle Bio-industries et biotechnologies, nous avons accueilli au sein de notre unité 5 stagiaires : Oumaïma Bouchaqour, Lisa Garrigos, Rana Hajji, Lou Lacam, Donia Mocho pendant la période du 13 au 24 janvier 2025.
Cette année, nous avons proposé aux étudiantes un sujet portant sur le choix d’une sonde fluorescente membranaire qui serait la plus adaptée pour délimiter automatiquement les contours des cellules. Après avoir reçu une formation pratique et théorique sur les microscopes, les étudiantes ont été initiées à la mise en forme et au traitement de leurs images sous le logiciel Fiji. Leurs résultats ont été présentés en fin de stage devant un jury constitué de membres internes et externes à l’unité.
Microscopie Electronique
Workshop
Cédric MESSAOUDI a participé au workshop de microscopie électronique dans le cadre du réseau de doctorant GAP, projet européen Marie Sklodowska-Curie (https://www.gapmscaproject.com) axé sur les aspects "biominéralisation", structure des systèmes osseux. Ce workshop s'est tenu à Strasbourg du 2 au 3 décembre 2024. Cédric a donné un cours théorique et pratique sur la reconstruction par tomographie électronique.
Nous rejoindre
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Voir les autres offres d'emploi du Centre de RechercheL'unité UAR2016/US43 : une offre de services
Microscopie Photonique
Le pôle microscopie photonique est constitué de 2 ingénieurs :
Marie-Noëlle Soler (manager, ingénieur de recherche)
Laetitia Besse (ingénieur d'étude)
Il rassemble des équipements très sophistiqués et des technologies de pointe en microscopie avancée. Son principal objectif est de fournir aux groupes de recherche de l’Institut Curie et aux utilisateurs extérieurs (académiques et privés) des approches d’imagerie à différentes échelles et des méthodes complémentaires, permettant l’imagerie de molécules, organelles, cellules, organismes et tissus entiers dans les états sains et pathologiques.
La plateforme possède 10 systèmes d’imagerie photonique : 3 microscopes standards à champ large, 3 vidéomicroscopes (dont un système IncuCyte), 2 microscopes confocaux à balayage laser conventionnels, dont un équipé pour l’imagerie biphotonique photomanipulation et mesure de durée de vie de fluorescence et l’autre équipé d’un laser blanc et 2 systèmes confocaux rapides (disques de Nipkow). Module super-résolution, imagerie à ondes évanescentes (TIRF azimutal) et imagerie à feuille de lumière sont disponibles sur ces confocaux rapides. La technique de FRAP est disponible en mode confocal et TIRF, quel que soit le système confocal. La plate-forme de microscopie photonique est utilisée chaque année par près de 100 utilisateurs, ce qui représente plus 12.000 heures d’utilisation des équipements.
La plateforme de microscopie photonique possède une expertise dans le domaine de l’imagerie dynamique et en techniques de microscopie avancée (F-techniques, super-résolution, FLIM, optogénétique, etc). La figure suivante montre les différentes applications et techniques disponibles sur la plateforme.
Les ingénieurs du pôle organisent et participent à de nombreuses formations tout au long de l’année. Ces formations sont organisées soit via la Cellule d’Enseignement de l’Institut Curie, soit via le CNRS (IFSEM and CNRS Formation Entreprises), les Universités (Paris Diderot, Paris-Saclay), ou encore les réseaux de microscopie (RTmfm, GdR Imabio).
Equipements
Microscopie Ionique
Le pôle microscopie ionique est géré par le manager, Ting-Di Wu (ingénieur de recherche).
L’activité du pôle s’articule autour d’un NanoSIMS-50, la microsonde ionique à balayage de CAMECA, un instrument dédié à l’analyse des échantillons présentant de très fines structures avec une composition hétérogène.
Il permet la détection de plusieurs éléments ou isotopes en parallèle, avec une résolution latérale pouvant atteindre quelques 50 nm. Il offre de remarquables applications dans différents domaines, notamment en biologie (imagerie intracellulaire, microbiologie) et en cosmochimie (analyse de poussières interplanétaires, de micrométéorites).
La technique SIMS (abréviation de l’anglais « Secondary Ion Mass Spectrometry », Spéctrométrie de masse d’ions secondaires) est basée sur le phénomène de l’émission des ions à partir de la surface d’un échantillon sous l’impact d’un faisceau d’ions primaires énergétiques.
Les ions secondaires issus de la cible sont caractéristiques de la composition chimique de l’objet examiné. Grâce à un spectromètre de masse qui permet le tri des ions collectés, la technique SIMS est l’une des rares techniques qui fournit une information aussi bien élémentaire (y compris des éléments légers comme l’hydrogène) qu'isotopique in situ.
Lorsque le faisceau primaire est focalisé sous forme d’un petit spot (sonde ionique), on réalise une analyse locale. Par le balayage de la sonde, on obtient la cartographie élémentaire et isotopique de la surface de l’échantillon.
L’un des avantages de la techniques SIMS est sa grande sensibilité par l’utilisation des ions primaires comme O–, O2+ ou Cs+ qui renforcent l’émission d’ions secondaires. Toutefois, la quantification de la concentration des éléments d’intérêt n’est aisée que dans certains cas particuliers. En revanche, le rapport isotopique peut être mesuré avec une excellente précision.
Par ailleurs, bien que la méthode SIMS ait un caractère destructif à cause de la pulvérisation de la surface de l’échantillon, avec ce processus, il est possible de réaliser une analyse couche par couche, donnant ainsi une vision en 3D de l’échantillon.
Exemple d'application en biologie :
Voici les résultats d'une collaboration avec le CNRS et l'Université de Toulouse sur la visualisation simultanée de la localisation de Mycobacterium tuberculosis et l’assimilation d’Asparagine (marquage 15N) par ces bactéries dans la cellule hôte (macrophage). Pour plus de détails : Gouzy A. et al (2014).
Pour en savoir plus:
Cryo-Microscopie Electronique
Le pôle de cryo-microscopie électronique est géré par le manager, Naoji Yubuki (ingénieur de recherche).
Le pôle est équipé d'un microscope électronique à transmission (JEOL JEM-2200FS) et de matériels de préparation pour la microscopie électronique (incluant 2 appareils de cryo-fixation à haute pression et un ultramicrotome).
Nous disposons de tout l'équipement nécessaire à la congélation d'échantillons liquides purifiés (protéines, lipides, polymères et nanoparticules), ainsi que de procaryotes et d'eucaryotes unicellulaires.
Nos installations offrent aux chercheurs une infrastructure en microscopie électronique de pointe pour la préparation avancée d'échantillons comprenant la cryo-préparation, la cryo-microscopie électronique et la tomographie sur microscope électronique à transmission.
L'observation cryogénique est possible grâce à deux portes échantillons cryo (Gatan 626) et un microscope électronique JEM 2200FS (FEG @ 200 kV) équipé d'une cryo-box. L'imagerie est facilitée par une caméra CCD US1000 Gatan et une caméra K2 Summit Gatan à détecteur d'électrons directs. Le microscope est également équipé d'un filtre d'énergie Omega dans la colonne d'électrons pour les acquisitions EFTEM (perte nulle et perte d'énergie) et la spectroscopie EELS.
Traitement et analyse d’images
Le pôle traitement et analyse d’image est constitué de 3 ingénieurs :
Cédric Messaoudi (Manager, ingénieur de recherche)
Laetitia Besse (Ingénieur d’étude)
Christine Walczak (Ingénieur d’étude)
Le pôle est expert de l’analyse des images issues de la microscopie photonique, de la microscopie électronique et/ou de la microscopie ionique, nous aidons tout utilisateur à trouver les meilleures approches de traitement et d’analyse des données.
Les demandes sont étudiées après l’acquisition des données ou de préférence lors des mises au point pour optimiser les futures expériences.
Au sein du pôle, nous proposons :
De former les utilisateurs sur des solutions déjà existantes : macro ou plugin ImageJ/Fiji, autres logiciels (QuPath, Imaris…) sur diverses applications.
De développer des analyses spécifiques et adaptées : macro ou plugin ImageJ/Fiji, scripts python.
Remerciements
Remerciements dans des publications
2025
Proneural–mesenchymal hybrid glioblastoma cells are resistant to therapy and dependent on nuclear import. Guillaume Bourmeau, Oceane Anezo, Jeremy Raymond, Alberto Ballestín, Cathy Pichol-Thievend, Juliette Reveilles, Adrien Thomas, Lin Wang, Melanie Miranda, Eve Moutaux, Stephane Liva, Valentino Ribecco, Laetitia Besse, Florent Dingli, Damarys Loew, Celine Vallot, Gaetano Gargiulo, Vidhya M Ravi, Kevin Joseph, Giorgio Seano. Neuro-Oncology, noaf160.
Carbon minibeam radiation therapy results in tumor growth delay in an osteosarcoma murine model. Annaïg Bertho, Christian Graeff, Ramon Ortiz, Maria Giorgi, Christoph Schuy, Marjorie Juchaux, Cristèle Gilbert, Julie Espenon, Julius Oppermann, Olga Sokol, Walter Tinganelli & Yolanda Prezado. Sci Rep 15, 7305.
2024
Multifaceted role of SUMOylation in maintaining centromere biology and regulation of replication fork restart in Schizosaccharomyces pombe. Shrena Chakraborty. Thèse de doctorat, 2024. HAL Id : tel-04892291 , version 1. Université Paris-Saclay.
A G-quadruplex-binding platinum complex induces cancer mitochondrial dysfunction through dual-targeting mitochondrial and nuclear G4 enriched genome. Keli Kuang, Chunyan Li, Fatlinda Maksut, Deepanjan Ghosh, Robin Vinck, Maolin Wang, Joël Poupon, Run Xiang, Wen Li, Fei Li, Zhu Wang, Junrong Du, Marie-Paule Teulade-Fichou, Gilles Gasser, Sophie Bombard & Tao Jia. J Biomed Sci 31, 50 (2024).
Thoracic Proton Minibeam Radiation Therapy: Tissue Preservation and Survival Advantage Over Conventional Proton Therapy. Bertho A, Ortiz R, Maurin M, Juchaux M, Gilbert C, Espenon J, Ramasamy G, Patriarca A, De Marzi L, Pouzoulet F, Prezado Y. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2024 Oct 1;120(2):579-592.
The significance of dose heterogeneity on the anti-tumor response of minibeam radiation therapy. Potiron S, Iturri L, Juchaux M, Espenon J, Gilbert C, McGarrigle J, Ortiz Catalan R, Fernandez-Rodriguez A, Sebrié C, Jourdain L, De Marzi L, Créhange G, Prezado Y. Radiother Oncol. 2024 Oct 10;201:110577.
The AsiDNA™ decoy mimicking DSBs protects the normal tissue from radiation toxicity through a DNA-PK/p53/p21-dependent G1/S arrest. Sesink A, Becerra M, Ruan JL, Leboucher S, Dubail M, Heinrich S, Jdey W, Petersson K, Fouillade C, Berthault N, Dutreix M, Girard PM. NAR Cancer. 2024 Mar 12;6(1):zcae011.
2023
Degradable polyisoprene by radical ring-opening polymerization and application to polymer prodrug nanoparticles. Lages, M., Pesenti, T., Zhu, C., Le, D., Mougin, J., Guillaneuf, Y. and Nicolas, J., 2023. Chemical Science, 14(12), pp.3311-3325.
Tubulin polyglutamylation differentially regulates microtubule‐interacting proteins. Mariya Genova, Lenka Grycova, Verena Puttrich, Maria M Magiera, Zdenek Lansky, Carsten Janke, Marcus Braun. The EMBO Journal, 10.15252/embj.2022112101, 42, 5, (2023)
53BP1 interacts with the RNA primer from Okazaki fragments to support their processing during unperturbed DNA replication. Melissa Leriche, Clara Bonnet, Jagannath Jana, Gita Chhetri, Sabrina Mennour, Sylvain Martineau, Vincent Pennaneach, Didier Busso, Xavier Veaute, Pascale Bertrand, Sarah Lambert, Kumar Somyajit, Patricia Uguen, Stéphan Vagner. Cell Reports, Volume 42, Issue 11, 2023, 113412, ISSN 2211-1247.
Anti-Cancer and Radio-Sensitizing Properties of New Bimetallic (<i>N</i>-Heterocyclic Carbene)-Amine-Pt(II) Complexes. Tao Jia, Oumar Diane, Deepanjan Ghosh, Myriem Skander, Gaelle Fontaine, Pascal Retailleau, Joël Poupon, Jérôme Bignon, Ytabelle Maga Moulai Siasia, Vincent Servajean, Nathalie Hue, Jean-François Betzer, Angela Marinetti, Sophie Bombard. Journal of Medicinal Chemistry, (2023 mai 16).
Lung Organotypic Slices Enable Rapid Quantification of Acute Radiotherapy Induced Toxicity. Dubail, M.; Heinrich, S.; Portier, L.; Bastian, J.; Giuliano, L.; Aggar, L.; Berthault, N.; Londoño-Vallejo, J.-A.; Vilalta, M.; Boivin, G.; et al. Cells 2023, 12, 2435
An interactive murine single-cell atlas of the lung responses to radiation injury. Curras-Alonso S, Soulier J, Defard T, Weber C, Heinrich S, Laporte H, Leboucher S, Lameiras S, Dutreix M, Favaudon V, Massip F, Walter T, Mueller F, Londoño-Vallejo JA, Fouillade C. Nat Commun. 2023 Apr 28;14(1):2445.
Ultrabright two-photon excitable red-emissive fluorogenic probes for fast and wash-free bioorthogonal labelling in live cells. Auvray M, Naud-Martin D, Fontaine G, Bolze F, Clavier G, Mahuteau-Betzer F. Chem Sci. 2023 Jul 4;14(30):8119-8128.
Replication gap suppression depends on the double-strand DNA binding activity of BRCA2. Vugic D, Dumoulin I, Martin C, Minello A, Alvaro-Aranda L, Gomez-Escudero J, Chaaban R, Lebdy R, von Nicolai C, Boucherit V, Ribeyre C, Constantinou A, Carreira A. Nat Commun. 2023 Jan 27;14(1):446.
2022
Photo-triggerable liposomes based on lipid-porphyrin conjugate and cholesterol combination: Formulation and mechanistic study on monolayers and bilayers. Massiot, J., Abuillan, W., Konovalov, O. and Makky, A., 2022. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes, 1864(1), p.183812.
Degradable vinyl copolymer nanoparticles/latexes by aqueous nitroxide-mediated polymerization-induced self-assembly. Lages, M., Gil, N., Galanopoulo, P., Mougin, J., Lefay, C., Guillaneuf, Y., Lansalot, M., D’agosto, F. and Nicolas, J., 2022. Macromolecules, 55(21), pp.9790-9801.
PFKFB4 interacts with ICMT and activates RAS/AKT signaling-dependent cell migration in melanoma. Sittewelle M, Kappès V, Zhou C, Lécuyer D, Monsoro-Burq AH. Life Sci Alliance. 2022 Aug 1;5(12):e202201377.
Tyro3 Targeting as a Radiosensitizing Strategy in Bladder Cancer through Cell Cycle Dysregulation. Silina L, Dufour F, Rapinat A, Reyes C, Gentien D, Maksut F, Radvanyi F, Verrelle P, Bernard-Pierrot I, Mégnin-Chanet F. Int J Mol Sci. 2022 Aug 4;23(15):8671.
Beta-blockers disrupt mitochondrial bioenergetics and increase radiotherapy efficacy independently of beta-adrenergic receptors in medulloblastoma. Maïlys Rossi, Julie Talbot, Patricia Piris, Marion Le Grand, Marie-Pierre Montero, et al. EBioMedicine, 2022, 82 (7), pp.104149.
Convergent and Practical Synthesis of Fluorescent Triphenylamine Derivatives and Their Localization in Living Cells. R. Mougeot, S. Oger, M. Auvray, T. Gallavardin, S. Leleu, F. Mahuteau-Betzer, X. Franck, Eur. J. Org. Chem. 2022, e202101397.
Cellular Detection of a Mitochondria Targeted Brominated Vinyl Triphenylamine Optical Probe (TP-Br) by X-Ray Fluorescence Microscopy. Nagarajan S, Poyer F, Fourmois L, Naud-Martin D, Medjoubi K, Somogyi A, Schanne G, Henry L, Delsuc N, Policar C, Bertrand HC, Mahuteau-Betzer F. Chemistry. 2022 Mar 10;28(15):e202104424.
Acridine-O6-benzylguanine hybrids: Synthesis, DNA binding, MGMT inhibition and antiproliferative activity. Franco Pinto J, Fillion A, Duchambon P, Bombard S, Granzhan A. Eur J Med Chem. 2022 Jan 5;227:113909.
Inhibition of DNA Repair by Inappropriate Activation of ATM, PARP, and DNA-PK with the Drug Agonist AsiDNA. Berthault, N.; Bergam, P.; Pereira, F.; Girard, P.-M.; Dutreix, M. Cells 2022, 11, 2149
The HHIP-AS1 lncRNA promotes tumorigenicity through stabilization of dynein complex 1 in human SHH-driven tumors. Bartl, J., Zanini, M., Bernardi, F. et al. Nat Commun 13, 4061 (2022).
On the Road Toward More Efficient Biocompatible Two-Photon Excitable Fluorophores. Auvray M, Bolze F, Naud-Martin D, Poulain M, Bossuat M, Clavier G, Mahuteau-Betzer F. Chemistry. 2022 Mar 7;28(14):e202104378.
2021
Synthesis and supramolecular arrangement of new stearoyl acid-based phenalenone derivatives. Godard, J., Chapron, D., Bregier, F., Rosilio, V. and Sol, V., 2021. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects, 612, p.125988
Gemcitabine lipid prodrugs: the key role of the lipid moiety on the self-assembly into nanoparticles. Coppens, E., Desmaële, D., Mougin, J., Tusseau-Nenez, S., Couvreur, P. and Mura, S., 2021. Chemistry, 32(4), pp.782-793
Gemcitabine lipid prodrug nanoparticles: Switching the lipid moiety and changing the fate in the bloodstream. Coppens, E., Desmaële, D., Naret, T., Garcia-Argote, S., Feuillastre, S., Pieters, G., Cailleau, C., Paul, J.L., Prost, B., Solgadi, A. and Michel, J.P., 2021. International Journal of Pharmaceutics, 609, p.121076.
BrdU immuno-tagged G-quadruplex ligands: a new ligand-guided immunofluorescence approach for tracking G-quadruplexes in cells. Thibaut Masson, Corinne Landras Guetta, Eugénie Laigre, Anne Cucchiarini, Patricia Duchambon, Marie-Paule Teulade-Fichou, Daniela Verga. Nucleic Acids Research, Volume 49, Issue 22, 16 December 2021, Pages 12644–12660,
BMP Signaling Is Enhanced Intracellularly by FHL3 Controlling WNT-Dependent Spatiotemporal Emergence of the Neural Crest. Alkobtawi, Mansour, Patrick Pla, et Anne H. Monsoro-Burq. Cell Reports 35, no 12 (22 juin 2021): 109289.
BRCA2 promotes DNA-RNA hybrid resolution by DDX5 helicase at DNA breaks to facilitate their repair. Sessa G, Gómez-González B, Silva S, Pérez-Calero C, Beaurepere R, Barroso S, Martineau S, Martin C, Ehlén Å, Martínez JS, Lombard B, Loew D, Vagner S, Aguilera A, Carreira A. EMBO J. 2021 Apr 1;40(7):e106018.
Rrp1 translocase and ubiquitin ligase activities restrict the genome destabilising effects of Rad51 in fission yeast. Muraszko J, Kramarz K, Argunhan B, Ito K, Baranowska G, Kurokawa Y, Murayama Y, Tsubouchi H, Lambert S, Iwasaki H, Dziadkowiec D. Nucleic Acids Res. 2021 Jul 9;49(12):6832-6848.
BRN2 is a non-canonical melanoma tumor-suppressor. Hamm, M., Sohier, P., Petit, V. et al. Nat Commun 12, 3707 (2021).
Tubulin glycylation controls axonemal dynein activity, flagellar beat, and male fertility. Gadadhar S, Alvarez Viar G, Hansen JN, Gong A, Kostarev A, Ialy-Radio C, Leboucher S, Whitfield M, Ziyyat A, Touré A, Alvarez L, Pigino G, Janke C. Science. 2021 Jan 8;371(6525):pii: eabd4914.
Modulation of cellular fate of vinyl triarylamines through structural fine tuning: to stay or not to stay in the mitochondria? Laura Fourmois, Florent Poyer, Aude Sourdon, Delphine Naud-Martin, Sounderya Nagarajan, et al. ChemBioChem, 2021, 22 (14), pp.2457-2467.
Distinct roles of α- and β-tubulin polyglutamylation in controlling axonal transport and in neurodegeneration. Bodakuntla S, Yuan X, Genova M, Gadadhar S, Leboucher S, Birling MC, Klein D, Martini R, Janke C, Magiera MM. EMBO J. 2021 Sep 1;40(17):e108498.
Silafluorene as a promising core for cell-permeant, highly bright and two-photon excitable fluorescent probes for live-cell imaging. Marie Auvray, Frederic Bolze, Gilles Clavier, Florence Mahuteau-Betzer. Dyes and Pigments 187 (2021) 109083
A role for Dynlt3 in melanosome movement, distribution, acidity and transfer. Aktary, Z., Conde-Perez, A., Rambow, F. et al. Commun Biol 4, 423 (2021).
2020
Assessment of various formulation approaches for the application of beta-lapachone in prostate cancer therapy. Wu, X., Kasselouri, A., Vergnaud-Gauduchon, J. and Rosilio, V., 2020. International journal of pharmaceutics, 579, p.119168.
Bioinspired polydopamine nanoparticles: synthesis, nanomechanical properties, and efficient PEGylation strategy. Zmerli, I., Michel, J.P. and Makky, A., 2020. Journal of Materials Chemistry B, 8(20), pp.4489-4504
Green one-step synthesis of medical nanoagents for advanced radiation therapy. Salado-Leza, D., Porcel, E., Yang, X., Štefančíková, L., Bolsa-Ferruz, M., Savina, F., Dragoe, D., Guerquin-Kern, J.L., Wu, T.D., Hirayama, R. and Remita, H., 2020. Nanotechnology, science and applications, pp.61-76
AsiDNA Is a Radiosensitizer with no Added Toxicity in Medulloblastoma Pediatric Models. Clin Cancer Res. Ferreira S, Foray C, Gatto A, Larcher M, Heinrich S, Lupu M, Mispelter J, Boussin FD, Pouponnot C, Dutreix M. Clin Cancer Res. 2020 Nov 1;26(21):5735-5746.
The nuclear pore primes recombination-dependent DNA synthesis at arrested forks by promoting SUMO removal. Kramarz, K., Schirmeisen, K., Boucherit, V. et al. Nat Commun 11, 5643 (2020).
FLASH Irradiation Spares Lung Progenitor Cells and Limits the Incidence of Radio-induced Senescence. Fouillade C, Curras-Alonso S, Giuranno L, Quelennec E, Heinrich S, Bonnet-Boissinot S, Beddok A, Leboucher S, Karakurt HU, Bohec M, Baulande S, Vooijs M, Verrelle P, Dutreix M, Londoño-Vallejo A, Favaudon V. Clin Cancer Res. 2020 Mar 15;26(6):1497-1506.
Targeted Knockout of b-Catenin in Adult Melanocyte Stem Cells Using a Mouse Line, Dct::CreERT2, Results in Disrupted Stem Cell Renewal and Pigmentation Defects. Madeleine Le Coz, Zackie Aktary, Nisamanee Charoenchon, Takahiro Kunisada, and Lionel Larue. Journal of Investigative Dermatology (2020) doi:10.1016/j.jid.2020.08.025
Topoisomerase IIα prevents ultrafine anaphase bridges by two mechanisms. Simon Gemble, Géraldine Buhagiar-Labarchède, Rosine Onclercq-Delic, Gaëlle Fontaine, Sarah Lambert and Mounira Amor-Guéret. Open Biol. 10:190259
Proper chromosome alignment depends on BRCA2 phosphorylation by PLK1. Ehlén Å, Martin C, Miron S, Julien M, Theillet FX, Ropars V, Sessa G, Beaurepere R, Boucherit V, Duchambon P, El Marjou A, Zinn-Justin S, Carreira A. Nat Commun. 2020 Apr 14;11(1):1819.
A decrease in NAMPT activity impairs basal PARP‑1 activity in cytidine deaminase deficient‑cells, independently of NAD+. Sandra Cunha Silveira, Géraldine Buhagiar‑Labarchède, Rosine Onclercq‑Delic, Simon Gemble, Elias Bou Samra, Hamza Mameri, Patricia Duchambon, Christelle Machon, Jérôme Guitton & Mounira Amor‑Guéret. Nature (2020) 10:13907
Tubulin polyglutamylation is a general traffic-control mechanism in hippocampal neurons. Bodakuntla S, Schnitzler A, Villablanca C, Gonzalez-Billault C, Bieche I, Janke C, Magiera MM. J Cell Sci 133: jcs241802
Measuring the Impact of Tubulin Posttranslational Modifications on Axonal Transport. Bodakuntla S, Magiera MM, Janke C. Methods Mol Biol 2101: 353-370
Knocking Out Multiple Genes in Cultured Primary Neurons to Study Tubulin Posttranslational Modifications. Bodakuntla S, Janke C, Magiera MM. Methods Mol Biol 2101: 327-351
2019
An autocrine ActivinB mechanism drives TGFβ/Activin signaling in Group 3 medulloblastoma. Morgane Morabito, Magalie Larcher, Florence MG Cavalli, Chloé Foray, Antoine Forget, Liliana Mirabal-Ortega, Mamy Andrianteranagna, Sabine Druillennec, Alexandra Garancher, Julien Masliah-Planchon, Sophie Leboucher, Abel Debalkew, Alessandro Raso, Olivier Delattre, Stéphanie Puget, François Doz, Michael D Taylor, Olivier Ayrault, Franck Bourdeaut, Alain Eychène, Celio Pouponnot. EMBO Molecular Medicine 11, no 8 (1 août 2019): e9830.
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Institut Curie - Centre de Recherche
Multimodal Imaging Center (MIC)
Centre universitaire - Bâtiment 110 - CS90030
Rue Henri Becqurel - 91401 Orsay Cedex
En voiture :
Depuis le RER B :
Comment nous citer dans une publication ?
Pour le pôle de microscopie photonique :
The authors acknowledge the Light Microscopy facility from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay).
Autres variantes avec citation personnelle des ingénieurs du pôle:
The authors acknowledge facility engineers, Marie-Noëlle Soler and Laetitia Besse from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay) for their help provided and expertise in light microscopy.
Pour le pôle de microscopie ionique :
The authors acknowledge the Ion Microscopy facility from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay).
Autres variantes avec citation personnelle des ingénieurs du pôle:
The authors acknowledge facility engineer, Ting-Di Wu from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay) for his help provided and expertise in ion microscopy.
Pour le pôle de cryo-microscopie électronique :
The authors acknowledge the Cryo-Electron Microscopy facility from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay).
Autres variantes avec citation personnelle des ingénieurs du pôle:
The authors acknowledge facility engineer, Naoji Yubuki from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay) for his help provided and expertise in (cryo-)electron microscopy.
Pour le pôle de Traitement et Analyse d'images :
The authors acknowledge the Image Processing and Analysis facility from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay).
Autres variantes avec citation personnelle des ingénieurs du pôle:
The authors acknowledge facility engineers, Cédric Messaoudi, Laetitia Besse and Christine Walczak from the Multimodal Imaging Center of the Institut Curie (CNRS UAR2016/ Inserm US43/ Institut Curie / Université Paris-Saclay) for useful advices on image processing.